Bilgi

3: Mikroskopi - Biyoloji

3: Mikroskopi - Biyoloji


We are searching data for your request:

Forums and discussions:
Manuals and reference books:
Data from registers:
Wait the end of the search in all databases.
Upon completion, a link will appear to access the found materials.

3: Mikroskopi

Biyoloji 160 Laboratuvar El Kitabı Laboratuvar 3 Mikroskopi PDF tamamlandı

web sitemiz okumanıza ve indirmenize izin verir Biyoloji 160 Laboratuvar El Kitabı Laboratuvar 3 Mikroskopi PDF tamamlandı istersen, rasgele okuyabilir ve indirebilirsiniz Biyoloji 160 Laboratuvar El Kitabı Laboratuvar 3 Mikroskopi PDF tamamlandı kanepenizin rahatlığından ayrılmak zorunda kalmadan. Biyoloji 160 Laboratuvar El Kitabı Laboratuvar 3 Mikroskopi PDF tamamlandı Okuyuculara gelecekte olumlu etki yaratan birçok referans ve bilgi verir. Biyoloji 160 Laboratuvar El Kitabı Laboratuvar 3 Mikroskopi PDF tamamlandı sınırlı sayıda ve yılın en çok satanıdır. Elde etmek Biyoloji 160 Laboratuvar El Kitabı Laboratuvar 3 Mikroskopi PDF tamamlandı PDF, Kindle, ePub, iTunes ve Mobi formatlarında da mevcut olan web sitemizi ziyaret ederek hem zamandan hem de paradan tasarruf edin. Nasıl alınır Biyoloji 160 Laboratuvar El Kitabı Laboratuvar 3 Mikroskopi PDF tamamlandı? Edinme Biyoloji 160 Laboratuvar El Kitabı Laboratuvar 3 Mikroskopi PDF tamamlandı basit ve kolaydır. soft dosyasını indirebilirsiniz. Biyoloji 160 Laboratuvar El Kitabı Laboratuvar 3 Mikroskopi PDF tamamlandı web sitemizde. Sonra indir Biyoloji 160 Laboratuvar El Kitabı Laboratuvar 3 Mikroskopi PDF tamamlandı. İndirme tamamlanana kadar birkaç dakika bekleyin. Bu yumuşak dosya Biyoloji 160 Laboratuvar El Kitabı Laboratuvar 3 Mikroskopi PDF tamamlandı istediğiniz zaman okumaya hazır. sadece Biyoloji 160 Laboratuvar El Kitabı Laboratuvar 3 Mikroskopi PDF tamamlandı başlıklı, diğer çekici çevrimiçi kitabı da web sitemizden indirebilirsiniz. Web sitemizi ziyaret ettiğiniz için çok teşekkür ederiz.

Biyoloji 160 Laboratuvar El Kitabı Laboratuvar 3 Mikroskopi PDF İndir Başlık : Biyoloji 160 Laboratuvar El Kitabı Laboratuvar 3 Mikroskopi Yazar : Puan : 4.97 (807 Oy) Sayfa sayısı : 102 Sayfa Biyoloji 160 Laboratuvar El Kitabı Laboratuvar 3 Mikroskopi formatlarda mevcuttur PDF, Tutuşmak, ePub, iTunes ve cep telefonu Ayrıca.


Yeni 3 boyutlu görüntüleme teknolojisi, floresan mikroskopisini daha verimli hale getirir

Dr Kevin Tsia (sağdan 1.) ve ekibi, 3D floresan mikroskopisini daha verimli ve daha az zarar verici hale getirmek için yeni bir optik görüntüleme teknolojisi geliştirdi. (Soldan sağa: Dr Yuxuan Ren, Dr Queenie Lai ve Dr Kevin Tsia) Kredi: @The University of Hong Kong

Bilim adamları, on yıllardır biyolojik hücrelerin ve organizmaların iç işleyişini incelemek için floresan mikroskobu kullanıyorlar. Bununla birlikte, bu platformların çoğu, biyolojik eylemi 3 boyutlu olarak takip etmek için genellikle çok yavaştır ve güçlü ışık aydınlatmasıyla canlı biyolojik örneklere çok zarar verir.

Bu zorlukların üstesinden gelmek için, Hong Kong Üniversitesi (HKU) Elektrik ve Elektronik Mühendisliği Bölümü'nde Doçent ve Biyomedikal Mühendisliği Lisans Programı Direktörü Dr. Kevin Tsia liderliğindeki bir araştırma ekibi, yeni bir optik görüntüleme geliştirdi. 3 boyutlu görüntülemeyi yüksek hızda gerçekleştirebilen ve tarama sırasında canlı örnekleri mevcut teknolojilerle elde edilemeyen bir düzeyde korumaya yetecek kadar güç verimli ve hassas olan teknoloji kodlu ışık levha dizisi mikroskobu (CLAM).

Bu gelişmiş görüntüleme teknolojisi yakın zamanda yayınlandı. Işık: Bilim ve Uygulamalar. Yenilik için bir ABD patent başvurusu yapıldı.

"CLAM, en son teknolojiyle karşılaştırılabilir yüksek kare hızında 3 boyutlu floresan görüntülemeye izin verir (

10 cilt/saniye). Daha da önemlisi, bilimsel laboratuvarlarda yaygın olarak kullanılan standart 3-D mikroskoplardan 1000 kat daha yumuşak olması ve tarama sırasında canlı örneklere verilen zararı büyük ölçüde azaltarak güç açısından çok daha verimli olması," diye açıklıyor Dr. Tsia.

Mevcut 3 boyutlu biyolojik mikroskopi platformları yavaştır çünkü örneğin tüm hacmi sırayla taranmalı ve nokta nokta, satır satır veya düzlem düzlem görüntülenmelidir. Bu platformlarda, tek bir 3 boyutlu anlık görüntü, numune üzerinde tekrarlanan aydınlatma gerektirir. Örnekler genellikle güneş ışığından binlerce ila milyonlarca kat daha fazla yoğunlukta aydınlatılır. Bunun örneğin kendisine zarar vermesi muhtemeldir, bu nedenle anatomik bilim, gelişim biyolojisi ve sinirbilim gibi çeşitli uygulamalar için uzun vadeli biyolojik görüntüleme için uygun değildir.

Ayrıca, bu platformlar genellikle sınırlı flüoresans "bütçesini" hızla tüketir - flüoresan ışığın yalnızca sınırlı bir süre için aydınlatma üzerine oluşturulabileceği temel bir kısıtlama, "foto-ağartma" adı verilen bir işlemde kalıcı olarak kaybolmadan önce. bir örnek üzerinde kaç tane görüntü alımı gerçekleştirilebilir.

Kodlu Işık Levha Dizisi Mikroskobu (CLAM) Kredi: @The University of Hong Kong

Dr. Tsia, "Numune üzerinde tekrarlanan aydınlatma, yalnızca foto-ağarmayı hızlandırmakla kalmaz, aynı zamanda nihai görüntüyü oluşturmayan aşırı floresan ışığı üretir. Bu nedenle, floresan 'bütçesi' bu görüntüleme platformlarında büyük ölçüde boşa harcanır," diye ekledi.

CLAM'ın kalbi, örneğin geniş bir alanına floresan uyarım olarak yaymak için bir çift paralel aynanın kullanımıyla tek bir lazer ışınını yüksek yoğunluklu bir 'ışık levhaları' dizisine dönüştürmektir.

"3 boyutlu hacmin tamamındaki görüntü, diğer tekniklerin gerektirdiği şekilde numuneyi noktadan noktaya veya satır satır veya düzlem düzlem taramaya gerek kalmadan eşzamanlı olarak (yani paralelleştirilmiş) yakalanır. Bu tür 3 CLAM'daki -D paralelleştirme, hassasiyet ve hızdan ödün vermeden çok nazik ve verimli bir 3-D floresan görüntülemeye yol açar", çalışmanın doktora sonrası araştırmacısı Dr. Yuxuan Ren tarafından belirtildiği gibi. CLAM ayrıca foto-ağartma etkisini azaltmada yaygın 3 boyutlu floresan görüntüleme yöntemlerinden daha iyi performans gösterir.

CLAM'da görüntü çözünürlüğünü ve kalitesini korumak için ekip, telekomünikasyonda aynı anda birden fazla sinyal göndermek için yaygın olarak kullanılan bir görüntü kodlama tekniği olan Code Division Multiplexing'e (CDM) yöneldi.

"Bu kodlama tekniği, tüm görüntü yığınlarını aynı anda 3 boyutlu olarak yakalamak ve dijital olarak yeniden yapılandırmak için bir 2 boyutlu görüntü sensörü kullanmamıza izin veriyor. CDM daha önce 3 boyutlu görüntülemede hiç kullanılmamıştı. Başarıya ulaşan teknolojiyi benimsedik, Sistemi geliştiren başka bir doktora sonrası araştırmacı olan Dr. Queenie Lai tarafından açıklandı.

Kavram kanıtı olarak, ekip, en son teknolojiyle karşılaştırılabilir saniyede 10 hacmin üzerinde bir hacim hızında bir mikroakışkan çipte hızlı mikroparçacık akışının 3 boyutlu videolarını yakalamak için CLAM'ı uyguladı.

CLAM ile yüksek hızda 3D görüntüleme. Kredi: Hong Kong Üniversitesi

"CLAM'ın görüntüleme hızında temel bir sınırlaması yoktur. Tek kısıtlama, sistemde kullanılan detektörün hızıdır, yani fotoğraf çekmek için kullanılan kamera. Yüksek hızlı kamera teknolojisi sürekli olarak ilerledikçe, CLAM her zaman bir sınıra ulaşmak için sınırına meydan okuyabilir. taramada daha da yüksek hız", çalışmayı başlatan doktora sonrası araştırma Dr. Jianglai Wu tarafından vurgulandı.

Ekip, fare glomerüllerinin ve bağırsak kan damarlarının yüksek kare hızında 3 boyutlu görselleştirmesini gerçekleştirmek için CLAM'ı HKU LKS Tıp Fakültesi'nin yeni geliştirilen doku temizleme teknolojisiyle birleştirmek için bir adım daha ileri gitti.

"Bu birleşik tekniğin, sinirbilim araştırmaları için beyindeki hücresel organizasyonu haritalamak gibi, arşiv biyolojik örneklerinin büyük ölçekli 3 boyutlu histopatolojik araştırmasına genişletilebileceğini tahmin ediyoruz." dedi.

"CLAM görüntüleme diğer tüm yöntemlerden önemli ölçüde daha yumuşak olduğundan, biyolojik numunenin canlı formlarında uzun vadeli ve sürekli 'gözetimini' benzersiz bir şekilde desteklemektedir. Bu, hücre biyolojisinin birçok alanında temel anlayışımızı potansiyel olarak etkileyebilir, örneğin bir Hayvan embriyosu, kanser hücrelerinin ilaçlar tarafından nasıl öldürüldüğünü görmek için hücrelerin/organizmaların bakteri veya virüsler tarafından nasıl enfekte olduğunu gerçek zamanlı olarak izlemek için yetişkin formuna dönüşür ve günümüzde mevcut teknolojilerin başaramadığı diğer zorlu görevler, "diyor Dr. Tsia .

CLAM, minimum donanım veya yazılım değişikliği ile mevcut birçok mikroskop sistemine uyarlanabilir. Bundan yararlanan ekip, hücre biyolojisi, hayvan ve bitki gelişim biyolojisi araştırmaları için mevcut CLAM sistemini daha da yükseltmeyi planlıyor.


Referanslar

Binnig, G., Quate, C.F. ve Gerber, C. Atomik kuvvet mikroskobu. Fizik Rev. Lett. 56, 930–933 (1986). Bu makale ilk olarak AFM'nin ilkelerini tanımladı.

Gerber, C. & Lang, H.P. Nanodünyanın kapıları nasıl açıldı. Nat. Nanoteknoloji. 1, 3–5 (2006).

Binnig, G., Gerber, C., Stoll, E., Albrecht, T.R. & Quate, C. F. Atomik kuvvet mikroskobu ile atomik çözünürlük. Europhys. Lett. 3, 1281–1286 (1987).

Drake, B. et al. Atomik kuvvet mikroskobu ile sudaki kristalleri, polimerleri ve süreçleri görüntüleme. Bilim 243, 1586–1589 (1989).

Radmacher, M., Tillmann, R.W. & Gaub, H.E. Atomik kuvvet mikroskobu ile kuvvet modülasyonu ile görüntüleme viskoelastisitesi. Biyofiz. J. 64, 735–742 (1993).

Horber, J.K. & Miles, M.J. Biyolojide tarama araştırması evrimi. Bilim 302, 1002–1005 (2003).

Binnig, G. & Rohrer, H. Atomlarla temas halinde. Rev. Modu. Fizik 71, S324 (1999).

Muller, D. J. & Dufrene, Y. F. Nanobiyoteknolojide çok işlevli bir moleküler araç kutusu olarak atomik kuvvet mikroskobu. Nat. Nanoteknoloji. 3, 261–269 (2008).

Muller, D. J. & Dufrene, Y. F. Atomik kuvvet mikroskobu: hücre yüzeyinde nanoskopik bir pencere. Trendler Hücre Biol. 21, 461–469 (2011).

Hansma, H.G. & Hoh, J.H. Atomik kuvvet mikroskobu ile biyomoleküler görüntüleme. Annu. Rev. Biyofiz. biyomol. Yapı. 23, 115–139 (1994).

Hinterdorfer, P. & Dufrene, Y. F. Atomik kuvvet mikroskobu kullanarak tek moleküler tanıma olaylarının tespiti ve lokalizasyonu. Nat. yöntemler 3, 347–355 (2006).

Ando, ​​T., Uchihashi, T. & Kodera, N. Yüksek hızlı AFM ve biyomoleküler sistemlere uygulamalar. Anne. Rev. Biyofiz. 42, 393–414 (2013).

Dufrene, Y.F., Martinez-Martin, D., Medalsy, I., Alsteens, D. & Muller, D.J. Biyolojik sistemlerin kuvvet-mesafe eğrisi tabanlı AFM ile multiparametrik görüntülemesi. Nat. yöntemler 10, 847–854 (2013).

Garcia, R. & Proksch, R. Yumuşak maddenin bimodal kuvvet mikroskobu ile nanomekanik haritalaması. Avro. Polim. J. 49, 1897–1906 (2013).

Radmacher, M., Tillmann, R.W., Fritz, M. & Gaub, H.E. Moleküllerden hücrelere: yumuşak numunelerin atomik kuvvet mikroskobu ile görüntülenmesi. Bilim 257, 1900–1905 (1992).

Henderson, E., Haydon, P.G. & Sakaguchi, D.S. Aktin filament dinamikleri, atomik kuvvet mikroskobu ile görüntülenen canlı glial hücrelerde. Bilim 257, 1944–1946 (1992).

Hoh, J. H. & Schoenenberger, C. A. Atomik kuvvet mikroskobu ile MDCK tek tabakalarının yüzey morfolojisi ve mekanik özellikleri. J. Hücre Bilimi. 107, 1105–1114 (1994).

Hoh, J.H., Lal, R., John, S.A., Revel, J.-P. & Arnsdorf, M. F. Atomik kuvvet mikroskobu ve boşluk bağlantılarının diseksiyonu. Bilim 253, 1405–1408 (1991).

Mou, J., Yang, J. & Shao, Z. Biyolojik olarak ilgili lipidlerin çift katmanlarına bağlı kolera toksin B-oligomerlerinin atomik kuvvet mikroskobu. J. Mol. Biol. 248, 507–512 (1995).

Schabert, F.A., Henn, C. & Engel, A. Native Escherichia koli Atomik kuvvet mikroskobu ile incelenen OmpF porin yüzeyleri. Bilim 268, 92–94 (1995).

Hansma, H.G. ve ark. Atomik kuvvet mikroskobu ile sıvı altında plazmid DNA'nın tekrarlanabilir görüntüleme ve diseksiyonu. Bilim 256, 1180–1184 (1992).

Egger, M. ve ark. Atomik kuvvet mikroskobu ile submoleküler çözünürlükte görüntülenen ıslak lipid protein zarları. J. Yapı. Biol. 103, 89–94 (1990).

Zasadzinski, J.A., Viswanathan, R., Madsen, L., Garnaes, J. & Schwartz, D.K. Langmuir-Blodgett filmleri. Bilim 263, 1726–1733 (1994).

Yang, J., Mou, J.X. & Shao, Z.F. Tarafından çalışılan boğmaca toksininin yapısı ve stabilitesi yerinde atomik kuvvet mikroskopisi. FEBS Lett. 338, 89–92 (1994).

Müller, D.J., Schabert, F.A., Büldt, G. & Engel, A. Atomik kuvvet mikroskobu ile nanometre altı çözünürlükte sulu çözeltilerde mor membranların görüntülenmesi. Biyofiz. J. 68, 1681–1686 (1995).

Müller, D.J., Engel, A., Carrascosa, J. & Veléz, M. Tampon solüsyonda atomik kuvvet mikroskobu ile yüksek çözünürlükte görüntülenen bakteriyofaj phi29 baş-kuyruk konektörü. EMBO J. 16, 2547–2553 (1997).

Czajkowsky, D.M., Sheng, S. & Shao, Z. Staphylococcal alfa-hemolizin, fosfolipid çift katmanlarında heksamerler oluşturabilir. J. Mol. Biol. 276, 325–330 (1998).

Seelert, H. et al. Bir bitki motorunun protonla çalışan türbini. Doğa 405, 418–419 (2000).

Scheuring, S., Reiss-Husson, F., Engel, A., Rigaud, J.L. & Ranck, J.L. Yüksek çözünürlüklü AFM topografları rubrivivax jelatinosus hafif hasat kompleksi LH2. EMBO J. 20, 3029–3035 (2001).

Fotiadis, D. ve ark. Atomik kuvvet mikroskobu: doğal disk zarlarında rodopsin dimerleri. Doğa 421, 127–128 (2003).

Goldsbury, C., Kistler, J., Aebi, U., Arvinte, T. & Cooper, G.J. Hızlandırılmış atomik kuvvet mikroskobu ile amiloid fibrillerinin büyümesini izlemek. J. Mol. Biol. 285, 33–39 (1999).

Bezanilla, M. ve ark. Atomik kuvvet mikroskobunda DNA'nın hareketi ve enzimatik bozunması. Biyofiz. J. 67, 2454–2459 (1994).

Grandbois, M., Clausen-Schaumann, H. & Gaub, H. Fosfolipaz A2 ile fosfolipid çift katmanlı bozunmasının atom kuvvet mikroskobu görüntülemesi. Biyofiz. J. 74, 2398–2404 (1998).

Muller, D.J. & Engel, A. Atomik kuvvet mikroskobu ile görüntülenen porin OmpF'nin voltaj ve pH kaynaklı kanal kapanması. J. Mol. Biol. 285, 1347–1351 (1999).

Müller, D.J., Hand, G.M., Engel, A. & Sosinsky, G. İzole edilmiş connexin 26 boşluk bağlantılarının yüzey yapılarındaki konformasyonel değişiklikler. EMBO J. 21, 3598–3607 (2002). Bu makale, yüksek çözünürlüklü iş yerinde hayvan iletişim kanallarının görüntülenmesi için AFM'nin kullanıldığını bildirmektedir.

Stoffler, D., Goldie, K.N., Feja, B & Aebi, U. Zaman atlamalı atomik kuvvet mikroskobu ile izlenen doğal nükleer gözenek komplekslerinin kalsiyum aracılı yapısal değişiklikleri. J. Mol. Biol. 287, 741–752 (1999).

Czajkowsky, D.M., Hotze, E.M., Shao, Z. & Tweten, R.K. Bir sitolizin ön gözenekinin dikey çökmesi, transmembran beta-firketelerini zara doğru hareket ettirir. EMBO J. 23, 3206–3215 (2004).

Scheuring, S. & Sturgis, J. N. Fotosentetik membranların kromatik adaptasyonu. Bilim 309, 484–487 (2005).

Engel, A. & Müller, D. J. Atomik kuvvet mikroskobu ile iş başında tek biyomoleküllerin gözlemlenmesi. Nat. Yapı. Biol. 7, 715–718 (2000).

Albrecht, T.R., Grutter, P., Horne, D. & Rugar, D.Q Gelişmiş kuvvet mikroskobu duyarlılığı için konsollar. J. Uygulama Fizik 69, 668–673 (1991).

Putman, C.A.J., Vanderwerf, K.O., Degroot, B.G., Vanhulst, N.F. & Greve, J. Sıvıda dokunma modu atomik kuvvet mikroskobu. Uygulama Fizik Lett. 64, 2454–2456 (1994).

Garcia, R. & Herruzo, E. T. Çok frekanslı kuvvet mikroskobunun ortaya çıkışı. Nat. Nanoteknoloji. 7, 217–226 (2012). Çok frekanslı kuvvet mikroskobundaki son ilerlemeyi açıklayan ve proteinleri ve hücreleri inceleme potansiyelini tartışan bir derleme.

Hansma, P.K. ve ark. Sıvılarda dokunma modu atomik kuvvet mikroskobu. Uygulama Fizik Lett. 64, 1738–1740 (1994).

Wegmann, S. ve ark. İnsan Tau izoformları, polimorfik yapı ve stabilite sergileyen şerit benzeri fibriller halinde birleşir. J. Biol. Kimya 285, 27302–27313 (2010).

Ido, S. et al. Sarmal aralığının ötesinde: doğal DNA'nın sulu çözelti içinde doğrudan görselleştirilmesi. ACS Nano 7, 1817–1822 (2013).

Ido, S. et al. Atomik kuvvet mikroskobu ile ortaya çıkan sulu çözeltide monoklonal antikorların immünoaktif iki boyutlu kendiliğinden toplanması. Nat. Anne. 13, 264–270 (2014).

Möller, C., Allen, M., Elings, V., Engel, A. & Müller, D.J. Dokunma modlu atomik kuvvet mikroskobu, protein yüzeylerinin aslına uygun yüksek çözünürlüklü görüntülerini üretir. Biyofiz. J. 77, 1050–1058 (1999).

Stark, M., Moller, C., Muller, D.J. & Guckenberger, R. Görüntülerden etkileşimlere: dokunma modlu atomik kuvvet mikroskobunda yüksek çözünürlüklü faz görüntüleme. Biyofiz. J. 80, 3009–3018 (2001).

Kasas, S. & Ikai, A. Atomik kuvvet mikroskobu görüntüleme için yuvarlak şekilli hücreleri sabitlemek için bir yöntem. Biyofiz. J. 68, 1678–1680 (1995).

Andre, G. et al. Canlılarda peptidoglikanın nano ölçekli organizasyonunu görüntüleme laktokok laktis hücreler. Nat. Komün. 1, 27 (2010).

Hansma, P.K., Drake, B., Marti, O., Gould, S.A. & Prater, C.B. Taramalı iyon iletkenlik mikroskobu. Bilim 243, 641–643 (1989).

Novak, P. et al. Atlamalı sonda iyon iletkenlik mikroskobu kullanarak nano ölçekli canlı hücre görüntüleme. Nat. yöntemler 6, 279–281 (2009).

Drake, B., Randall, C., Bridges, D. ve Hansma, P.K. Yeni bir iyon algılayıcı derin atomik kuvvet mikroskobu. Rev. Sci. Enstrüman. 85, 083706 (2014).

Roos, W.H., Bruinsma, R. & Wuite, G.J.L. Physical virology. Nat. Fizik 6, 733–743 (2010).

Oesterhelt, F. et al. Bireysel bakteriorhodopsinlerin açılma yolları. Bilim 288, 143–146 (2000).

Kufer, S.K., Puchner, E.M., Gumpp, H., Liedl, T. & Gaub, H.E. Tek moleküllü kes ve yapıştır yüzey montajı. Bilim 319, 594–596 (2008).

Braunschweig, A.B., Huo, F. ve Mirkin, C.A. Moleküler baskı. Nat. Kimya 1, 353–358 (2009).

Cattin, C.J. ve ark. Tek hayvan hücrelerinde mitotik ilerlemenin mekanik kontrolü. Proc. Natl Acad. bilim Amerika Birleşik Devletleri 112, 11258–11263 (2015).

Butt, H. J., Cappella, B. & Kappl, M. Atomik kuvvet mikroskobu ile kuvvet ölçümleri: teknik, yorumlama ve uygulamalar. Sörf. bilim Temsilci 59, 1–152 (2005).

Dong, M., Husale, S. & Şahin, O. Mikrosaniye kuvvet spektroskopisi ile protein yapısal esnekliğinin belirlenmesi. Nat. Nanoteknoloji. 4, 514–517 (2009).

Martinez-Martin, D., Herruzo, E.T., Dietz, C., Gomez-Herrero, J. & Garcia, R. Bimodal dinamik kuvvet mikroskobu ile invaziv olmayan protein yapısal esneklik haritalaması. Fizik Rev. Lett. 106, 198101 (2011).

Herruzo, E.T., Perrino, A.P. & Garcia, R. Yumuşak maddenin hızlı nanomekanik spektroskopisi. Nat. Komün. 5, 3126 (2014).

Preiner, J. ve ark. Termal hareketin yüksek hızlı AFM görüntüleri, arayüzey membran protein parçalarının sertlik haritasını sağlar. Nano Lett. 15, 759–763 (2015).

Radmacher, M., Cleveland, J.P., Fritz, M., Hansma, H.G. & Hansma, P.K. Etkileşim kuvvetlerini atomik kuvvet mikroskobu ile haritalama. Biyofiz. J. 66, 2159–2165 (1994).

Heinz, W.F. & Hoh, J.H. Atomik kuvvet mikroskobu kullanarak biyolojik yüzeylerin uzaysal olarak çözümlenmiş kuvvet spektroskopisi. Trendler Biyoteknoloji. 17, 143–150 (1999).

Rotsch, C. & Radmacher, M. Fibroblastlarda hücre iskeleti yapısı ve mekaniğinde ilaca bağlı değişiklikler: bir atomik kuvvet mikroskobu çalışması. Biyofiz. J. 78, 520–535 (2000).

Matzke, R., Jacobson, K. & Radmacher, M. Doğrudan, yapışık hücrelerin bölünmesi sırasında karık sertleşmesinin yüksek çözünürlüklü ölçümü. Nat. Hücre Biol. 3, 607–610 (2001).

Plodinec, M. ve ark. Meme kanserinin nanomekanik imzası. Nat. Nanoteknoloji. 7, 757–765 (2012).

Rebelo, L.M., de Sousa, J.S., Mendes Filho, J. & Radmacher, M. Atomik kuvvet mikroskobu ile ölçülen farklı böbrek kanseri fenotiplerinden hücrelerin viskoelastik özelliklerinin karşılaştırılması. Nanoteknoloji 24, 055102 (2013).

Touhami, A., Nysten, B. & Dufrêne, Y. F. Mikrobiyal hücrelerin esnekliğinin atomik kuvvet mikroskobu ile nano ölçekli haritalanması. Langmuir 19, 4539–4543 (2003).

Viani, M.B. ve ark. Küçük konsollar için tasarlanmış yeni bir atomik kuvvet mikroskobu ile tek biyopolimerlerin hızlı görüntülenmesi ve hızlı kuvvet spektroskopisi. Rev. Sci. Enstrüman. 70, 4300–4303 (1999). Bu makale, hızlı AFM görüntüleme ve kuvvet spektroskopisi için küçük konsolların icadını bildirmektedir.

Viani, M.B. ve ark. Tek moleküllerin kuvvet spektroskopisi için küçük konsollar. J. Uygulama Fizik 86, 2258–2262 (1999).

Ando, ​​T. et al. Biyolojik makromolekülleri incelemek için yüksek hızlı bir atomik kuvvet mikroskobu. Proc. Natl Acad. bilim Amerika Birleşik Devletleri 98, 12468–12472 (2001).

Alcaraz, J. et al. Konsol üzerindeki hidrodinamik sürükleme için atomik kuvvet mikroskobu ile yumuşak numunelerin mikroreolojik ölçümlerinin düzeltilmesi. Langmuir 18, 716–721 (2002).

Şahin, O., Magonov, S., Su, C., Quate, C.F. & Solgaard, O. Zamanla değişen nanomekanik kuvvetleri ölçmek için tasarlanmış bir atomik kuvvet mikroskobu ucu. Nat. Nanoteknoloji. 2, 507–514 (2007).

Medalsy, I., Hensen, U. & Muller, D.J. Kuvvet-hacim AFM ile moleküler çözünürlükte doğal proteinlerin kimyasal ve fiziksel özelliklerinin görüntülenmesi ve nicelendirilmesi. Ange. Kimya Int. Ed. 50, 12103–12108 (2011).

Sullan, R.M., Li, J.K. & Zou, S. Çok bileşenli lipid çift katmanlarının yapılarının ve nanomekanik özelliklerinin doğrudan korelasyonu. Langmuir 25, 7471–7477 (2009).

Heu, C., Berquand, A., Elie-Caille, C. ve Nicod, L. HaCaT keratinositlerinin glifosat ile indüklenen sertleşmesi, canlı hücreler üzerinde bir Peak Force Tapping çalışması. J. Yapı. Biol. 178, 1–7 (2012).

Formosa-Dague, C., Speziale, P., Foster, T.J., Geoghegan, J.A. & Dufrene, Y.F. Çinko bağımlı mekanik özellikleri stafilokok aureus biyofilm oluşturan yüzey proteini SasG. Proc. Natl Acad. bilim Amerika Birleşik Devletleri 113, 410–415 (2016).

Alsteens, D., Trabelsi, H., Soumillion, P. & Dufrene, Y. F. Canlı bakterilerden çıkan tek bakteriyofajların multiparametrik atomik kuvvet mikroskobu görüntülemesi. Nat. Komün. 4, 2926 (2013).

Carrasco, C. et al. Viral kabuklarda yerleşik mekanik stres. Biyofiz. J. 100, 1100–1108 (2011).

Zink, M. & Grubmuller, H. Güney fasulye mozaik virüsünün ikosahedral kabuğunun mekanik özellikleri: bir moleküler dinamik çalışması. Biyofiz. J. 96, 1350–1363 (2009).

Carrasco, C. et al. Bir virüsün DNA aracılı anizotropik mekanik takviyesi. Proc. Natl Acad. bilim Amerika Birleşik Devletleri 103, 13706–13711 (2006).

Alsteens, D., Garcia, M.C., Lipke, P.N. & Dufrene, Y. F. Canlı mantar hücrelerinde yapışma nanodomainlerinin kuvvetle indüklenen oluşumu ve yayılması. Proc. Natl Acad. bilim Amerika Birleşik Devletleri 107, 20744–20749 (2010). Bu makale, mikrobiyal hücre yapışma proteinlerinin mekanik kuvvet altında nanokümeler oluşturduğunu göstermek için tanıma görüntülemenin kullanıldığını bildirmektedir.

Pfreundschuh, M., Hensen, U. & amp Muller, D.J. Elektrostatik alanın kantitatif görüntülemesi ve nanometre altı çözünürlükte bir transmembran protein gözenek tarafından üretilen potansiyel. Nano Lett. 13, 5585–5593 (2013).

Evans, E.A. & Calderwood, D.A. Hücre yapışmasında kuvvetler ve bağ dinamiği. Bilim 316, 1148–1153 (2007).

Medalsy, I.D. & Muller, D.J. Proteinlerin ve zarların nanomekanik özellikleri, yükleme hızına ve elektrostatik etkileşimlere bağlıdır. ACS Nano 7, 2642–2650 (2013).

Frisbie, C.D., Rozsnyai, L.F., Noy, A., Wrighton, M.S. & Lieber, C.M. Kimyasal kuvvet mikroskobu ile fonksiyonel grup görüntüleme. Bilim 265, 2071–2074 (1994).

Hinterdorfer, P., Baumgartner, W., Gruber, H.J., Schilcher, K. & Schindler, H. Atomik kuvvet mikroskobu ile bireysel antikor-antijen tanıma olaylarının tespiti ve lokalizasyonu. Proc. Natl Acad. bilim Amerika Birleşik Devletleri 93, 3477–3481 (1996).

Ludwig, M., Dettmann, W. & Gaub, H. E. Moleküler tanımaya dayalı atomik kuvvet mikroskobu görüntüleme kontrastı. Biyofiz. J. 72, 445–448 (1997).

Grandbois, M., Dettmann, W., Benoit, M. & Gaub, H.E. Bir atomik kuvvet mikroskobu kullanarak kırmızı kan hücrelerinin afinite görüntüleme. J. Histochem. sitokim. 48, 719–724 (2000).

Florin, E.L., Moy, V.T. & Gaub, H.E. Bireysel ligand-reseptör çiftleri arasındaki yapışma kuvvetleri. Bilim 264, 415–417 (1994).

Lee, G.U., Chrisey, L.A. & Colton, R.J. Tamamlayıcı DNA zincirleri arasındaki kuvvetlerin doğrudan ölçümü. Bilim 266, 771–773 (1994).

Kienberger, F. et al. NTA-His6 bağının tanıma kuvveti spektroskopisi çalışmaları. Tek Mol. 1, 59–65 (2000).

Thie, M. et al. Trofoblast ve rahim epiteli arasındaki etkileşimler: yapışkan kuvvetlerin izlenmesi. Hımm. tekrar. 13, 3211–3219 (1998).

Kim, H., Arakawa, H., Osada, T. & Ikai, A. AFM ile hücre yapışma kuvvetinin ölçülmesi: canlı bir MC3T3-E1 hücresinde vitronektin reseptörlerinin dağılımı. ultramikroskopi 97, 359–363 (2003).

Kim, H. et al. AFM tarafından canlı bir CHO hücre yüzeyindeki EP3 reseptörlerinin sayısının ölçülmesi. ultramikroskopi 106, 652–662 (2006).

Roduit, C. ve ark. Sert nano ölçekli membran alanları tarafından ortaya çıkarılan canlı hücrelerin elastik membran heterojenliği Biyofiz. J. 94, 1521–1532 (2008).

Alsteens, D. ve ark. Ligand bağlayıcı serbest enerji manzaralarını ölçerken G proteinine bağlı reseptörlerin görüntülenmesi Nat. yöntemler 12, 845–851 (2015). Bu makale, AFM kalemine bir ligand bağlamanın, onun insan G proteini ile birleşmiş reseptörlere bağlanmasını görüntülemesine ve haritalamasına ve ligand bağlayıcı serbest enerji ortamını yeniden yapılandırmasına izin verdiğini göstermiştir.

Andre, G. et al. Duvardaki teikoik asitlerin floresan ve atomik kuvvet mikroskobu görüntülemesi. Lactobacillus plantarum. ACS Kimya. Biol. 6, 366–376 (2011).

Dupres, V. et al. Canlı bakteriler üzerindeki bireysel adezinlerin nano ölçekli haritalanması ve fonksiyonel analizi. Nat. yöntemler 2, 515–520 (2005). Bu makale, biyoligandlarla etiketlenmiş AFM uçlarının, bakteriyel patojenler üzerindeki tekli yapışma proteinlerinin dağılımını haritalayabildiğini ve bunların nano-domainlere montajını ortaya çıkarabildiğini bildirmektedir.

Pfreundschuh, M. et al. AFM ile doğal insan membran reseptörlerini görüntülerken iki ligand bağlama bölgesini tanımlama ve ölçme. Nat. Komün. 6, 8857 (2015).

Raab, A. et al. Kuvvet mikroskobu ile antikor tanıma görüntüleme. Nat. Biyoteknoloji. 17, 901–905 (1999).

Stroh, C. ve ark. Tek moleküllü tanıma görüntüleme mikroskobu. Proc. Natl Acad. bilim Amerika Birleşik Devletleri 101, 12503–12507 (2004).

Chtcheglova, L.A., Waschke, J., Wildling, L., Drenckhahn, D. & Hinterdorfer, P. Vasküler endotelyal hücreler üzerinde nano ölçekli dinamik tanıma görüntüleme. Biyofiz. J. 93, L11–L13 (2007).

Zhang, S., Aslan, H., Besenbacher, F. & Dong. M. Dinamik nanomekanik haritalama ile nicel biyomoleküler görüntüleme. Kimya Soc. Rev. 43, 7412–7429 (2014).

Dietz, C., Herruzo, E.T., Lozano, J.R. & Garcia, R. Nanomekanik birleştirme, sıvı içinde 5 nm süperparamanyetik parçacıkların algılanmasını ve görüntülenmesini sağlar. Nanoteknoloji 22, 125708 (2011).

Herruzo, E.T., Asakawa, H., Fukuma, T. & Garcia, R. 10 piconewton, angstrom ve alt dakika çözünürlükleri ile sıvı içinde üç boyutlu nicel kuvvet haritaları. Nano ölçekli 5, 2678–2685 (2013).

Fukuma, T., Higgins, M.J. & Jarvis, S.P. Angstrom çözünürlüğünde lipid çift katmanları üzerindeki bireysel içsel hidrasyon katmanlarının doğrudan görüntülenmesi. Biyofiz. J. 92, 3603–3609 (2007).

Cartagena, A., Hernando-Perez, M., Carrascosa, J.L., de Pablo, P.J. & Raman, A. Mapping laboratuvar ortamında Çok harmonik atomik kuvvet mikroskobu kullanılarak yüksek çözünürlükte bozulmamış ve parçalanmış viryonların yerel malzeme özellikleri. Nano ölçekli 5, 4729–4736 (2013).

Cartagena-Rivera, A.X., Wang, W.H., Geahlen, R.L. & Raman, A. Atomik kuvvet mikroskobu kullanılarak canlı hücrelerin hızlı, çok frekanslı ve kantitatif nanomekanik haritalaması. bilim Temsilci 5, 11692 (2015).

Kim, D. & Şahin, O. Atomik kuvvet mikroskobu kullanarak bir protein kompleksi içindeki kimyasal grupların görüntülenmesi ve üç boyutlu rekonstrüksiyonu. Nat. Nanoteknoloji. 10, 264–269 (2015).

Shekhawat, G.S. & Dravid, V.P. gömülü yapıların yakın alan ultrason holografisini tarayarak nano ölçekli görüntülemesi. Bilim 310, 89–92 (2005).

Tetard, L. ve ark. Nanomekanik holografi ile hücrelerde nanoparçacıkların görüntülenmesi. Nat. Nanoteknoloji. 3, 501–505 (2008).

Verbiest, G.J. & Rost, M.J. Beating, heterodin algılama şemalarında karıştırmayı yener. Nat. Komün. 6, 6444 (2015).

Kindt, J.H., Fantner, G.E., Cutroni, J.A. & Hansma, P.K. Sonlu eleman analizi kullanan hızlı taramalı prob mikroskoplarının rijit tasarımı. ultramikroskopi 100, 259–265 (2004).

Ando, ​​T., Uchihashi, T. & Fukuma, T. Dinamik biyomoleküler süreçlerin nano-görselleştirilmesi için yüksek hızlı atomik kuvvet mikroskobu. prog. Sörf. bilim 83, 337–437 (2008).

Kodera, M., Yamashita, H. & Ando, ​​T. Yüksek hızlı atomik kuvvet mikroskobu için tarayıcının aktif sönümlenmesi. Rev. Sci. Enstrüman. 76, 053708 (2005).

Kodera, N., Sakashita, M. & Ando, ​​T. Yüksek hızlı atomik kuvvet mikroskobu için dinamik orantılı-integral-diferansiyel denetleyici. Rev. Sci. Enstrüman. 77, 083704 (2006).

Viani, M.B. ve ark. Protein-protein etkileşimlerini gerçek zamanlı olarak araştırmak. Nat. Yapı. Biol. 7, 644–647 (2000).

Ando, ​​T. et al. Hareket halindeki biyolojik makromolekülleri incelemek için yüksek hızlı bir atomik kuvvet mikroskobu. KimyaFizikKimya 4, 1196–1202 (2003).

Shibata, M., Yamashita, H., Uchihashi, T., Kandori, H. & Ando, ​​T. Yüksek hızlı atomik kuvvet mikroskobu, fotoaktive edilmiş bakteriorhodopsin'de dinamik moleküler süreçleri gösterir. Nat. Nanoteknoloji. 5, 208–212 (2010).

Kodera, N., Yamamoto, D., Ishikawa, R. & Ando, ​​T. Yürüyen miyozin V'nin yüksek hızlı atomik kuvvet mikroskobu ile görüntülenmesi. Doğa 468, 72–76 (2010). Bu makale, yüksek hızlı AFM'nin gerçek zamanlı olarak çalışan proteinleri izlemek için kullanılabileceğini gösterdi.

Uchihashi, T., Iino, R., Ando, ​​T. & Noji, H. Yüksek hızlı atomik kuvvet mikroskobu, rotorsuz F(1)-ATPase'in döner katalizini ortaya koyuyor. Bilim 333, 755–758 (2011).

Chiaruttini, N. ve ark. Yüklü ESCRT-III spiral yaylarının gevşemesi, membran deformasyonunu tetikler. Hücre 163, 866–879 (2015).

Sakiyama, Y., Mazur, A., Kapinos, L.E. & Lim, R.Y. Yüksek hızlı atomik kuvvet mikroskobu ile çözülen nükleer gözenek kompleksi taşıma bariyerinin mekansal-zamansal dinamikleri. Nat. Nanoteknoloji. 11, 719–723 (2016).

Fantner, G.E., Barbero, R.J., Gray, D.S. & Belcher, A.M. Yüksek hızlı atomik kuvvet mikroskobu kullanılarak tek tek bakteri hücreleri üzerinde ölçülen antimikrobiyal peptit aktivitesinin kinetiği. Nat. Nanoteknoloji. 5, 280–285 (2010).

Yamashita, H. et al. Yüksek hızlı AFM ile canlı bakteri hücre yüzeyinde tek moleküllü görüntüleme. J. Mol. Biol. 422, 300–309 (2012).

Shibata, M., Uchihashi, T., Ando, ​​T. & Yasuda, R. Canlı hücrelerde nanometre ölçekli görüntüleme için uzun uçlu yüksek hızlı atomik kuvvet mikroskobu. bilim Temsilci 5, 8724 (2015).

Uchihashi, T., Watanabe, H., Fukuda, S., Shibata, M. & Ando, ​​T. Daha geniş biyolojik uygulamalar için yüksek hızlı AFM'nin işlevsel uzantısı. ultramikroskopi 160, 182–196 (2016).

El-Kirat-Chatel, S. & Dufrene, Y. F. Nano ölçekli görüntüleme kandida — bağıntılı floresan-atomik kuvvet mikroskobu kullanılarak makrofaj etkileşimi. ACS Nano 6, 10792–10799 (2012).

Sharma, A., Anderson, K. & Muller, D.J. Aktin mikro sırtları, lazer taramalı konfokal ve atomik kuvvet mikroskobu ile karakterize edilir. FEBS Lett. 579, 2001–2009 (2005).

Schillers, H., Medalsy, I., Hu, S., Slade, A.L. ve Shaw, J.E. PeakForce Tapping, canlı hücreler üzerindeki bireysel mikrovillileri çözer. J. Mol. Tanımak. 29, 95–101 (2016).

Benoit, M., Gabriel, D., Gerisch, G. & Gaub, H.E. Tek moleküllü kuvvet spektroskopisi ile ölçülen hücre yapışmasında ayrık etkileşimler. Nat. Hücre Biol. 2, 313–317 (2000).

Krieg, M. et al. Çekme kuvvetleri, zebra balıklarında germ tabakası organizasyonunu yönetir. Nat. Hücre Biol. 10, 429–436 (2008).

Cuerrier, C.M., Gagner, A., Lebel, R., Gobeil, F. Jr & Grandbois, M. Trombin ve bradikinin'in membran deformasyonu yoluyla izlenen endotelyal hücre mekanik özellikleri üzerindeki etkisi. J. Mol. Tanımak. 22, 389–396 (2009).

Pelling, A.E., Veraitch, F.S., Chu, C.P., Mason, C. & Horton, M.A. Erken apoptoz sırasında tek hücrelerin mekanik dinamiği. Hücre Motil. Sitoskel. 66, 409–422 (2009).

Ramanathan, S.P. ve ark. Kortikal miyosin II'nin Cdk1'e bağlı mitotik zenginleşmesi, hücre hapsine karşı hücre yuvarlamasını teşvik eder Nat. Hücre Biol. 17, 148–159 (2015).

Stewart, M.P. ve ark. Hidrostatik basınç ve aktomiyosin korteksi, mitotik hücre yuvarlamasını sağlar. Doğa 469, 226–230 (2011).

Duman, M. et al. Kombine floresan mikroskobu ve eş zamanlı topografi ve tanıma görüntüleme kullanılarak hücresel membran reseptörlerinin iyileştirilmiş lokalizasyonu. Nanoteknoloji 21, 115504 (2010).

Lipke, P.N. ve ark. Güçlendirme ilişkileri: amiloidler, mayalarda yapışma nanodomainleri oluşturur. Trendler Mikrobiyol. 20, 59–65 (2012).

Alsteens, D. ve ark. Bir virüsün hayvan hücrelerine ilk bağlanma adımlarının nanomekanik haritalanması. Nat. Nanoteknoloji. 12, 177–183 (2017). Bu makale, AFM kalemine bir kuduz virüsünün eklenmesinin, canlı hayvan hücrelerinin eş odaklı mikroskopi ve AFM ile görüntülenmesine, aynı anda virüs bağlanmasını lokalize etmesine ve virüs bağlama sürecini ve serbest enerji ortamını ölçmesine izin verdiğini göstermiştir.

Churnside, A.B. & Perkins, T.T. Ultrastable atomik kuvvet mikroskobu: geliştirilmiş kuvvet ve konumsal kararlılık. FEBS Lett. 588, 3621–3630 (2014).

King, G.M., Carter, A.R., Churnside, A.B., Eberle, L.S. & Perkins, T.T. Ultrastabil atomik kuvvet mikroskobu: ortam koşullarında atomik ölçekte stabilite ve kayıt. Nano Lett. 9, 1451–1456 (2009).

Franz, C.M. & Muller, D.J. AFM ile odak yapışma yapısını analiz etme. J. Hücre Bilimi. 118, 5315–5323 (2005).

Lucas, R.W., Kuznetsov, Y.G., Larson, S.B. ve McPherson, A. Crystallization of Brome mozaik virüsü ve T = 1 Brome mozaik virüsü partikülleri yapısal bir geçişin ardından. Viroloji 286, 290–303 (2001).

Friedrichs, J., Taubenberger, A., Franz, C.M. & Muller, D.J. Hızlandırılmış AFM ile görselleştirilen bireysel kolajen fibrillerinin hücresel yeniden modellenmesi. J. Mol. Biol. 372, 594–607 (2007).

Mari, S.A. et al. MlotiK1 potasyum kanalının kapılanması, siklik nükleotid bağlama alanlarının büyük yeniden düzenlemelerini içerir. Proc. Natl Acad. bilim Amerika Birleşik Devletleri 108, 20802–20807 (2011).

Bestembayeva, A. et al. Nano ölçekli sertlik topografisi, bozulmamış nükleer gözenek komplekslerinde taşıma bariyerinin yapısını ve mekaniğini ortaya çıkarır. Nat. Nanoteknoloji. 10, 60–64 (2015).


Apologia Biyoloji için Mikroskop Kiti

Bu Apologia biyoloji mikroskop seti ile öğrencilerin mikroskop laboratuvarlarından en iyi şekilde yararlanmalarına yardımcı olun! Bu kit, Apologia'nın Biyoloji ile Yaratılışı Keşfetme kursu için mikroskop slaytları ve diğer öğelerle birlikte gelir. Devamını oku

TANIM

Öğrencilerin yer bilimi ve biyoloji hakkında bilgi edinmelerine yardımcı olun. Bu Apologia Biyoloji Mikroskop laboratuvar kiti ile mikroskop laboratuvarlarından en iyi şekilde yararlanın! Bu kit Mikroskop lamları ve mikroskop kısmı için gerekli diğer parçalar ile birlikte gelir. özür dilemek Biyoloji ile Yaratılışı Keşfetmek tabii, 3. baskı.

Bu biyoloji setini ve bilim deneyimlerinizi daha etkili ve uygun maliyetli hale getirmek için, daha pahalı beyaz balık blastodisk yerine bir Ascaris (yuvarlak kurt) slayt sunuyoruz. Her ikisi de hayvan mitozunu gösterir, ancak Ascaris slaytı aslında aşamaları daha net gösterir!

Bu Apologia bilim seti, Apologia'nın Biyoloji dersinin önemli bir bölümü için materyal sağlar. Daha kapsamlı bir Apologia biyoloji laboratuvarı deneyimi için bu kiti Apologia Biyoloji için Diseksiyon Kiti ile eşleştirin.

Bu seti sipariş ediyorsanız ayrıca Apologia Hazır Kaydırak Seti sipariş etmenize gerek yoktur. Kendi biyoloji slaytlarınızı oluşturmak istiyorsanız, ödeme yapmadan önce boş slaytlarımıza göz atmayı unutmayın.

Apologia için malzeme arıyorsanız Biyoloji ile Yaratılışı Keşfetmek Tabii, 2. baskı bu bilim laboratuvarı kitini Civciv Embriyo Çalışma Kılavuzumuzla birlikte sipariş edin.

Önemli Not:

A mikroskop laboratuvarlarını yapmak için mikroskop gereklidir Bu Apoligia biyoloji dersinde. İşte iki mükemmel tavsiye:

  • bizim tavsiye ederiz ekonomikEv Mikroskobu - evde eğitim gören aileler için en çok satan ve çok popüler bir seçim! Sağlam, kullanımı kolay, uzun ömürlü, değişken yoğunluklu LED aydınlatmaya sahiptir ve gözlemcilerin karmaşık hücre ayrıntılarını görmelerini sağlar
  • Apologia, Ulusal Optik Gelişmiş Mikroskop'u önerir - daha pahalı ama aynı zamanda mükemmel bir seçenek

Ailenizin ihtiyaçlarını en iyi şekilde karşılayan bir mikroskop seçerken daha fazla yardım ve bilgi için Mikroskop Seçme kılavuzumuza da göz atabilirsiniz.

DAHA FAZLA BİLGİ KUTUSU

Daha fazla bilgi

İÇİNDEKİLER SEKMESİ

Apologia Biyoloji Mikroskop Kiti

Bu kit aşağıdaki öğeleri içerir (bireysel veya isteğe bağlı öğeleri sipariş etmek için kit sipariş formunu indirin):

Bireysel slaytlar

  • Ascaris Mitoz
  • Allium (soğan) Kök Ucu
  • amip proteini
  • Euglena
  • Diatomlar (deniz)
  • Ficus (dikot) Damarlı Yaprak
  • Grantia (sünger) Spiküller
  • Hidra (tomurcuklanan)
  • paramesiyum
  • Planarya (enjekte edilmiş)
  • Düğünçiçeği (dikot) Kök
  • Düğünçiçeği (dikot) Kökü
  • Spirogyra
  • Volvox
  • Zea Mays (monokot) Kök
  • Zea Mays (monokot) Kökü

Diğer öğeler

  • İyot Çözeltisi (Lugol's) 30ml
  • Lens Temizleme Kağıdı, 50/paket
  • Metilen Mavisi, %1, 15 ml
  • 4 Pipet (ilaç damlalıkları)
  • Slide Coverslips, öğrenci
  • 12 Düz Cam Slayt
  • 12 İçbükey Slayt

ÖZELLİKLER SEKMESİ

Bilim Avantajlarım ÜCRETSİZ! Home Science Tools hesabınıza giriş yapmış durumdayken siparişinizi verin ve siparişiniz kargoya verildiğinde otomatik olarak %6'ya kadar geri kazanın!


Mikroskop Slaytları Nasıl Hazırlanır

Bu makale, Bess Ruff, MA tarafından ortaklaşa yazılmıştır. Bess Ruff, Florida Eyalet Üniversitesi'nde Coğrafya Doktora öğrencisidir. 2016 yılında Kaliforniya Üniversitesi, Santa Barbara'dan Çevre Bilimi ve Yönetimi alanında yüksek lisans derecesini aldı. Karayipler'de deniz mekansal planlama projeleri için anket çalışmaları yürüttü ve Sürdürülebilir Balıkçılık Grubu için yüksek lisans bursiyeri olarak araştırma desteği sağladı.

Bu makalede, sayfanın alt kısmında bulabileceğiniz 7 referans bulunmaktadır.

wikiHow, yeterince olumlu geri bildirim aldığında bir makaleyi okuyucu onaylı olarak işaretler. Bu durumda, oy veren okuyucuların %89'u makaleyi yararlı buldu ve okuyucu onaylı statümüze ulaştı.

Bu makale 52.259 kez görüntülendi.

Microscope slides are used to examine single-celled organisms and to look up-close at small plants and organisms. There are two types of prepared slides: dry mounts and wet mounts. Each type of preparation method is used for mounting different types of cells. If you’re wet mounting a particularly pale or translucent specimen, you may need to stain the specimen so it’s visible beneath the microscope.


For dates, locations and anticipated attendance of major national meetings check out the FASEB, Biophysical Society, American Association for Cell Biology, and Microscopy Society of America.

A virtual workshop on Advances in COVID-19 Prevention and Treatment Enabled by Structural Biology Research will be hosted by the Advanced Photon Source at Argonne National Laboratory on May 11 and May 12, 2021.
Broadly, the workshop will present areas where structural biology research, including macromolecular crystallography and cryoelectron microscopy, intersects with in vivo, in vitro, and in silico studies of SARS-CoV-2 and COVID-19. More precisely, the topics will include (a) viral biology, (b) vaccine, therapeutic, and diagnostic antibody studies, and (c) small-molecule drug discovery as it relates to viral proteases and other viral proteins. In addition, as this year’s events emphasize the need for a coordinated, long-term strategy to prevent future pandemics of zoonotic origin, a broader One Health perspective on viral pathogens will be presented.

The exciting list of speakers includes: Pamela Bjorkman, Andrea Carfi, James Davis, Alice Douangamath, Haley Dugan, Yogesh Gupta, Robert Hoffman, Nicholas Hurlburt, Andrzej Joachimiak, Christine Kreuder Johnson, Youngchang Kim, Fang Li, Jonna Mazet, Jason McLellan, Andrew Mesecar, Arvind Ramanathan, Erica Saphire, Karla Satchell, Natalie Strynadka, Drew Weissman, Ian Wilson, and Cheng Zhang.
Agenda

The workshop is hosted by Michael Becker (GM/[email protected]), Karolina Michalska (SBC-CAT), and Kay Perry (NE-CAT). It is part of the Virtual APS/CNM User's Meeting and will be held from 10AM to

3PM Central Time on May 11 and May 12, 2021. To attend the workshop, register (for free) for the APS User's Meeting and choose WK #9. You must select both sessions, separately, to register for the workshop.
Kayıt


New Microscopy Technique Shows Cells’ 3-D Ultrastructure in New Detail

The method melds the best of super-resolution fluorescence and electron microscopy to show how proteins relate to cells’ fine structure.

Inside a cell, tentacled vesicles shuttle cargo for sorting. Neighboring neurons cling to one another through a web-like interface. DNA rearranges in the nucleus as stem cells differentiate into neurons. And a new microscopy technique shows it all, in exquisite detail.

The technique, called cryo-SR/EM, melds images captured from electron microscopes and super-resolution light microscopes, resulting in brilliant, clear, detailed views of the inside of cells – in 3-D.

For years, scientists have probed the microscopic world inside cells, developing new tools to view these basic units of life. But each tool comes with a tradeoff. Light microscopy makes it simple to identify specific cellular structures by tagging them with easy-to-see fluorescent molecules. With the development of super-resolution (SR) fluorescence microscopy, these structures can be viewed with even greater clarity. But fluorescence can reveal only a few of the more than 10,000 proteins in a cell at a given time, making it difficult to understand how these few relate to everything else. Electron microscopy (EM), on the other hand, reveals all cellular structures in high-resolution pictures – but delineating one feature from all others by EM alone can be difficult because the space inside cells is so crowded.

Combining the two techniques gives scientists a clear picture of how specific cellular features relate to their surroundings, says Harald Hess, a senior group leader at the Howard Hughes Medical Institute’s Janelia Research Campus. “This is a very powerful method.”

Janelia Research Scientist David Hoffman and Senior Scientist Gleb Shtengel spearheaded the project under the leadership of Hess and Janelia senior fellow Eric Betzig, an HHMI Investigator at the University of California, Berkeley. The work is described January 16, 2020, in the journal Bilim.

First, the scientists freeze cells under high pressure. That halts the cells’ activity quickly and prevents the formation of ice crystals that can damage cells and disrupt the structures being imaged. Next, the researchers place samples in a cryogenic chamber, where they’re imaged in 3-D by super-resolution fluorescence microscopy at temperatures less than ten degrees above absolute zero. Then, they’re removed, embedded in resin, and imaged in a powerful electron microscope developed by the Hess lab. This scope shoots a beam of ions at the cells’ surface, milling away bit by bit while taking pictures of each newly exposed layer. A computer program then stitches the images together into a 3-D reconstruction.

Finally, researchers overlay the 3-D image data from both microscopes. The result: stunning imagery that reveals cells’ inner details with remarkable clarity.

Below, a few examples of this imagery illustrate how scientists are using the technique. “There’s already been a lot of interest,” says Hess. “There are so many more experiments to do — a whole world of cells out there to study.”

The nucleus of a neuron looks dramatically different before (left) and after (right) the cell begins to assume its final adult role. As the cell matures, DNA is repackaged within the nucleus to turn on a new set of genes. These changes are reflected in the different patterns of gray mottling and colored fluorescence inside the two cells. “The technique provided an amazingly detailed snapshot of the state of the nucleus before and after differentiation,” says David Solecki of St. Jude Children’s Research Hospital, who collaborated on the project. Credit: D. Hoffman et al./Bilim 2020

Developing neurons stick together. This video shows exactly how those cells adhere to each other, revealing Swiss-cheese-like linkages that help young neurons properly migrate to their final destinations in the nervous system. Purple and green super-resolution fluorescence images of adhesion proteins at these linkages correlate with electron microscopy images showing the membrane’s structure in detail. Credit: D. Hoffman et al./Bilim 2020

Cells are filled with small vesicles ­­– membrane-bound sacks that help cells store proteins, break down cellular garbage, and carry cargo. These many varieties of vesicles are indistinguishable from each other under an electron microscope alone. But with cryo-SR/EM, their distinct features become clear. This clip zooms in on endosomes, which shuttle cargo to different regions within the cell. Credit: D. Hoffman et al./Bilim 2020

Researchers from outside Janelia can access the technique through Janelia’s Advanced Imaging Center.


New Microscope Captures Detailed 3-D Movies of Cells Deep Within Living Systems

Merging lattice light sheet microscopy with adaptive optics reveals the most detailed picture yet of subcellular dynamics in multicellular organisms.

An immune cell migrates through a zebrafish's inner ear while scooping up particles of sugar (blue) along the way. Credit: T. Liu et al./Bilim 2018

Our window into the cellular world just got a whole lot clearer.

Physicist Eric Betzig, a group leader at the Howard Hughes Medical Institute’s Janelia Research Campus, and colleagues report the work April 19, 2018, in the journal Bilim.

Scientists have imaged living cells with microscopes for hundreds of years, but the sharpest views have come from cells isolated on glass slides. The large groups of cells inside whole organisms scramble light like a bagful of marbles, Betzig says. “This raises the nagging doubt that we are not seeing cells in their native state, happily ensconced in the organism in which they evolved.”

Even when viewing cells individually, the microscopes most commonly used to study cellular inner workings are usually too slow to follow the action in 3-D. These microscopes bathe cells with light thousands to millions of times more intense than the desert sun, Betzig says. “This also contributes to our fear that we are not seeing cells in their natural, unstressed form.

“It’s often said that seeing is believing, but when it comes to cell biology, I think the more appropriate question is, ‘When can we believe what we see?’” he adds.

To meet these challenges, Betzig and his team combined two microscopy technologies they first reported in 2014, the same year he shared the Nobel Prize in Chemistry. To unscramble the light from cells buried within organisms, the researchers turned to adaptive optics – the same technology used by astronomers to provide clear views of distant celestial objects through Earth’s turbulent atmosphere. Then, to image the internal choreography of these cells quickly, yet gently, in 3-D, the team used lattice light sheet microscopy. That technology rapidly and repeatedly sweeps an ultra-thin sheet of light through the cell while acquiring a series of 2-D images, building a high-resolution 3-D movie of subcellular dynamics.

The new microscope is essentially three microscopes in one: an adaptive optical system to maintain the thin illumination of a lattice light sheet as it penetrates within an organism, and another adaptive optical system to create distortion-free images when looking down on the illuminated plane from above. By shining a laser through either pathway, the researchers create a bright point of light within the region they wish to image. The distortions in the image of this “guide star” tell the team the nature of the optical aberrations along either pathway. The researchers can correct these distortions by applying equal but opposite distortions to a pixelated light modulator on the excitation side, and a deformable mirror on detection. Over large volumes, the distortions change as the light traverses different tissues. In this case, the team assembles large 3-D images from a series of subvolumes, each with its own independent excitation and detection corrections.

The results offer an electrifying new look at biology, and reveal a bustling metropolis in action at the subcellular level. In one movie from the microscope, a fiery orange immune cell wriggles madly through a zebrafish’s ear while scooping up blue sugar particles along the way. In another, a cancer cell trails sticky appendages as it rolls through a blood vessel and attempts to gain purchase on the vessel wall.

The complexity of the 3-D multicellular environment can be overwhelming, Betzig says, but the clarity of his team’s imaging permits them to computationally “explode” the individual cells in tissue to focus on the dynamics within any particular one, such as the remodeling of internal organelles during cell division.

All this detail is hard to see without adaptive optics, Betzig says. “It’s just too damn fuzzy.” In his view, adaptive optics is one of the most important areas in microscopy research today, and the lattice light sheet microscope, which excels at 3-D live imaging, is the perfect platform to showcase its power. Adaptive optics hasn’t really taken off yet, he says, because the technology has been complicated, expensive, and until now, not clearly worth the effort. But within 10 years, Betzig predicts, biologists everywhere will be on board.

The next big step is making that technology affordable and user-friendly. “Technical demonstrations and publications don’t amount to a hill of beans. The only metric by which a microscope should be judged is how many people use it, and the significance of what they discover with it,” Betzig says.

The current microscope fills a 10-foot-long table. “It’s a bit of a Frankenstein’s monster right now,” says Betzig, who is moving to the University of California, Berkeley, in the fall. His team is working on a next-generation version that should fit on a small desk at a cost within the reach of individual labs. The first such instrument will go to Janelia’s Advanced Imaging Center, where scientists from around the world can apply to use it. Plans that scientists can use to create their own microscopes will also be made freely available. Ultimately, Betzig hopes that the adaptive optical version of the lattice microscope will be commercialized, as was the base lattice instrument before it. That could bring adaptive optics into the mainstream.

“If you really want to understand the cell in vivo, and image it with the quality possible in vitro, this is the price of admission,” he says.

Tsung-Li Liu, Srigokul Upadhyayula, Daniel E. Milkie, Ved Singh, Kai Wang, Ian A. Swinburne, Kishore R. Mosaliganti, Zach M. Collins, Tom W. Hiscock, Jamien Shea, Abraham Q. Kohrman, Taylor N. Medwig, Daphne Dambournet, Ryan Forster, Brian Cunniff, Yuan Ruan, Hanako Yashiro, Steffen Scholpp, Elliot M. Meyerowitz, Dirk Hockemeyer, David G. Drubin, Benjamin L. Martin, David Q. Matus, Minoru Koyama, Sean G. Megason, Tom Kirchhausen, Eric Betzig, “Observing the Cell in Its Native State: Imaging Subcellular Dynamics in Multicellular Organisms.” Bilim. Published online April 19, 2018.


Mikroskopi

Join the Microscopy lab and learn about the different types of microscopy to understand the mechanisms behind. You will be trained in light microscopy, transmission electron microscopy and fluorescence microscopy.

Use magnification

In the Microscopy lab, you will be presented with chicken intestinal slides that have been stained with Anilin, Orange G and Fuchsin. Using the 5x magnification, you will identify the villus, and then proceed with higher magnifications to identify smooth muscle, extracellular tissue, epithelial cells, Goblet cells and the nuclei.

Try out the electron microscope

Electron microscopes can be used to visualize objects that are too small to see when using a light microscope—for example the microvilli, mitochondria and the junctions between cells. In the Microscopy lab, you will examine a chicken intestine slide that is specially prepared for a transmission electron microscope. You can zoom in and out to observe different cellular structures.

Learn about fluorescence staining techniques

You will learn about fluorescence staining techniques and how it can be used to visualize specific structures. For example, by staining the DNA with DAPI, you can easily identify a cell’s nucleus. In this part of the lab, you will examine a chicken intestine sample that is infected with a retrovirus and observe how the virus infects the lymphocytes and how it inhibits inflammation. The retrovirus can be further developed as medicine for coeliac disease.


Videoyu izle: Dişin Yapısı Elektron Mikroskop Görüntüsü (Temmuz 2022).


Yorumlar:

  1. Daudi

    Ne yetenek mesajı

  2. Meztik

    In my opinion, you are making a mistake. Kanıtlayabilirim.

  3. Brus

    Kabul, oldukça kullanışlı mesaj

  4. Fauzahn

    Bu soru üzerine sonsuzca konuşmak mümkündür.

  5. Yozil

    Özür dilerim, ama bence yanılıyorsun. Tartışacağız. Bana PM'de yazın, halledeceğiz.

  6. Diya Al Din

    Blogda krizle ilgili neden bu kadar az konu var, bu soruyla ilgilenmiyorsunuz?

  7. Abdul

    bunu isterdim

  8. Heru

    I suggest you to visit a site, with an information large quantity on a theme interesting you.



Bir mesaj yaz